비엠엘(BML)

검체 취급의 공통적 주의사항

• 검체는 무균적으로 채취되어야 합니다.
• 임상소견 및 의뢰목적, 의뢰 의사명은 세포유전학 검사 의뢰서에 반드시 기록해야 합니다.
• 검체 채취부터 배양까지 24시간 이상 지연될 경우에는 검사시행이 지연되거나 간혹 검사에 실패할 수 있습니다.
• 검체 보관 및 운송은 실온 상태로 합니다.
• 태아의 염색체 검사는 검체 채취 전에 이 검사의 정확성 및 검사 한계에 대해 환자나 보호자에게 충분히 설명하고 동의를 얻은 후에 검사를 시행하는 것이 바람직합니다.
• 세포유전학검사는 세포유전 의뢰지와 함께 반드시 유전자검사동의서를 작성해서 보내주시기 바랍니다.

검체별 준수사항

말초혈액(Peripheral blood; PB)

• Sodium heparin tube에 혈액 5 ㎖ (소아 3 ㎖)을 무균적으로 채취하고 조심스럽게 아래 위로 혼합하여 응고되지 않도록 합니다.

※ Sodium heparin 이외의 항응고제는 세포 분열능력 저하로 인하여 배양에 실패할 확률이 높습니다.
※ 환자의 임상소견 및 추정진단에 따라 검사 방법 자체가 달라지므로 반드시 의뢰서에 기록합니다 .
※ 검체 채취부터 배양까지 24시간 이상이 경과되면, 검사에 실패할 확률이 높습니다.
※ 검체 보관 및 운송은 실온 상태로 합니다.

태아조직(product of conceptus; POC)

• 태아 조직은 오염될 확률이 매우 높습니다. 무균적으로 채취한 조직을 비엠엘에서 제공하는 전용용기에 넣어 의뢰해 주십시오.
• 융모막을 포함한 조직으로 의뢰하여 주십시오.

※ 자궁내에서 사망한지 24시간이 경과한 후에 채취한 태아 검체는 배양에 실패할 확률이 높습니다.

양수(amniotic fluid; AF)

• 검체에 모체세포가 혼입되는 것을 방지하기 위해 채취 시 처음 약 2 ㎖ 정도를 반드시 버린 다음 약 20~30 ㎖ 정도의 양수를 무균적으로 채취하고 이를 비엠엘에서 제공하는 50 ㎖ cocnical tube로 옮겨 담아 의뢰합니다.

※ 양수 내 태아 유래 세포가 적은 경우 (원심 후 침전물이 육안으로 확인이 안됨)와 육안적으로 검체의 색깔이 붉거나 (혈액이 혼합되었음을 의미) 짙은 갈색인 경우는 배양에 실패할 수도 있습니다.

융모막(Chronic villi sampling; CVS)

• 융모막 20~40 mg을 채취하여 비엠엘에서 제공하는 융모막 전용용기에 넣어 의뢰합니다.
• Zoom-stereo microscope로 관찰하여 순수한 융모막이 적을 경우에는 직접법, In situ와 플라스크 방법을 병행 할 수 없고, 단지 플라스크 방법만을 시행하기 때문에 모체 세포의 오염 가능성이 높아지고 결과가 지연되거나 혹은 배양에 실패할 수도 있습니다.

제대혈(Cord blood)

• 제대혈은 응고가 잘 되므로 채취 후 즉시 sodium heparin tube에 넣고 여러 번 잘 흔들어 혼합해야 응고가 방지됩니다.

혈액종양질환의 진단, 예후 추정을 위한 염색체 검사

• 만성백혈병, 급성백혈병, 골수증식성질환, 골수이형성증후군, 기타 혈액질환의 진단, 치료약제 선택, 예후 추정에 필요한 검사입니다.
• 골수 흡인 검체나 말초혈액으로 실시합니다.